Comments
Glycerin wird in vielen Experimenten den Puffern, Medien und Reagenzien zugesetzt. In der Regel wird wasserfreies oder 87%iges Glycerin (Wassergehalt ca. 13%) verwendet. Letzteres ist qualitativ mit wasserfreiem Glycerin identisch, besitzt aber den Vorteil weniger viskos zu sein. Wasserfreies Glycerin ist schwer zu pipettieren, besonders bei niedrigeren Temperaturen. Glycerin wird durch Autoklavieren (20 Min., Flüssigprogramm) sterilisiert. Bei photometrischen Proteinbestimmungen stört Glycerin in Konzentrationen über 5% (v/v) bei 205 nm und über 40% (v/v) bei 280 nm.Zur Erhöhung der Transfektionseffizienz von Säugerzellen nach der Calciumphosphat-Transfektion, werden Zellen unter Umständen einem Glycerin- oder DMSO-Schock ausgesetzt (3, 4). Beide Substanzen sind giftig für die Zellen und die Dauer der Inkubation muss für jeden Zelltyp bestimmt werden. Eine Weiterentwicklung der Calciumphosphat-Methode schlägt die Zugabe von Glycerin bereits während der eigentlichen Transfektion vor (5). In der Reinigung von Bakteriophage l ist Glycerin als Trennmedium geeignet (Ref. 3 Seite 2.78).Einfrieren von Zellkultur-Zellen:Glycerin wird in der Zellkultur zum Einfrieren von Zellen alternativ zu DMSO verwendet. Glycerin soll die Eiskristallbildung während des Einfrierprozesses verhindern, da dadurch die Zellen zerstört werden. Üblicherweise wird Glycerin in der Konzentration von 10% verwendet. Als Einfriermedium verwendet man häufig das übliche Kulturmedium unter Zusatz von 10% Glycerin oder DMSO bzw. manche verwenden auch 90% Serum, 10% Glycerin oder DMSO, was die Lebensfähigkeit erhöht. Die meisten Zellen werden nicht direkt in flüssigen Stickstoff transferriert, sondern langsam eingefroren (Kühlschrank -70°C gut verpackt für langsames Kühlen - Stickstoff). Bei Wiederauftauen für weitere Kultivierung sollte das Auftauen möglichst schnell durchgeführt werden. Es empfiehlt sich die Zellen einmal in Medium zu waschen oder innerhalb von 48 Stunden nach dem Ausplattieren das Medium zu wechseln.Einfrieren von Bakterien (2):Zum Einfrieren von Bakterien wird je nach Technik 15 - 50% Glycerin zugesetzt. Methode I: 0,15 Volumina steriles Glycerin werden zu 0,85 Volumina Kultur in LB-Medium gegeben und in sterilen Schraubverschluß-Kryoröhrchen im Ethanol/Trockeneisbad oder flüssigem Stickstoff eingefroren. Die Lagerung erfolgt bei -70°C. Methode II: Von einer Agarplatte wird eine Kultur abgeschabt oder das Pellet einer Übernachtkultur wird gut mit TM-Puffer (10 mM Tris · HCl (pH 7,4), 10 mM MgSO₄, 50% Glycerin (Endkonzentration) gemischt und eingefroren wie oben beschrieben.Um die Bakterien wieder in Kultur zu nehmen, muss die Suspension nicht aufgetaut werden. Es reicht, wenn mit einem Zahnstocher etwas Material abgeschabt und damit Medium angeimpft wird.
FAQs
Was ist die CAS-Nummer von Glycerol?
Die CAS-Nummer von Glycerol ist 56-81-5.CAS Glycerol?
Die CAS-Nummer von Glycerol ist 56-81-5.< h3>CAS 56-81-5? Die CAS-Nummer 56-81-5 wird Glycerol zugeordnet. Was bedeutet Glycerol 87%?
Glycerol 87% bedeutet, dass der Massenanteil 0,87 beträgt. Mit anderen Worten, in einer Probe von 100 g Glycerol sind 87% der Masse von 87 g Glycerol vorhanden.Welche Reinheit hat Glycerol?
Die Reinheit von Glycerol beträgt 87%.Was bedeutet Glycerol 87% bedeuten?
Glycerin 87% bedeutet, dass der Massenanteil 0,87 beträgt. Mit anderen Worten, in einer Probe von 100 g Glycerol sind 87% der Masse von 87 g Glycerol vorhanden. Welche Reinheit hat Glycerol?
Die Reinheit von Glycerol beträgt 87%.
Literature
(1) Ogden, R.C. & Adams, D.A. (1987) Methods Enzymol. 152, 61-87. Überblick über Gelelektrophorese von DNA und RNA mit Rezepten für Puffer und Lösungen und Durchführung der Gelelektrophorese. (2) Miller, H. (1987) Methods Enzymol. 152, 145-170. Herstellung von Phagen- und Plasmid-DNA zur Aufbewahrung als Reinkultur. (3) Sambrook, J., Fritsch, E.F. & Maniatis, T. (1989) Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2nd Edition. Seite 16.32-35 (Glycerin-Schock); Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, New York. (4) Ausubel, F.A., Brent, R., Kingston, R.E., Moore, D.D., Seidman, J.G., Smith, J.A. & Struhl, K. (eds.) (1995) Current Protocols in Molecular Biology. Seite 9.1.7 (Glycerin-Schock); Suppl. 36. Greene Publishing & Wiley-Interscience, New York. (5) Wilson, S.P. & Smith, L.A. (1997) Anal. Biochem. 246, 148-150. Zugabe von Glycerin während der DNA-Inkubation erhöht die Transfektionseffizienz.
